慧穎生物人甲狀腺細胞株熱銷中

MTT點板時一定要將細胞消化成單個細胞，而且一定要混勻，用排槍，否則，MTT的SD會狂大！

2、點板布局

其實這一點很多人不懈一顧。如果你的細胞要養48 h或更長，建議不要吝嗇96-孔板的四周邊孔，這32個邊孔不能使用，建議加入滅菌PBS以飽和中間64個孔的水分。因為細胞培養過程中，邊孔的水分蒸發很快，培養液及里面的藥物會出現濃縮現象，細胞的狀況就復雜了，有些人稱之為%26ldquo;邊緣效應%26rdquo;這些孔的SD也會狂大，既然如此，不如不用。

3、加MTT

如果確認你考察的藥物沒有氧化還原性，你可以直接加入MTT溶液（總體積的1/10），如果你沒有把握，建議在加MTT前換一次液；如果你肯定考察的藥物的氧化還原性很強，比如谷胱甘肽、Vit E、VitC，那建議你用PBS將細胞洗洗，否則這些藥物會將MTT還原成棕褐色沉淀，這種效果可能是你不需要的。

4、加入MTT后的反應

時間為3-4h，此時棄去各孔中的液體在加入200微升的DMSO。為了將沉淀溶解*，盡可能將水棄除干凈，加入DMSO后在搖床上震搖10min。提醒：如果你的細胞貼壁不好，此時的沉淀在棄去液體時易丟失，因此貼壁不好的細胞在點板時記得將96孔板用多聚賴氨酸處理處理，要么在棄液體時先用甩板機離心，再輕輕棄去液體。關于DMSO的量，每孔的體積有點兒差異不干擾檢測，只要能將沉淀*溶解就行了。至于DMSO的體積差異不同為什么不影響檢測值已經被數學證明了，在此我不多說，如果有人不明白我再證明給他看。當然為了養成良好的實驗習慣，DMSO的體積還是一致的好。

5、檢測MTT

還原的MTT在460-630均有較好的吸收，如果你的酶標儀是濾光片，可以選470 nm左右或630 nm左右的濾光片，如果酶標儀有單波長，你可以在檢測前掃描一下吸收譜，選用zui大細說波長檢測就是了，zui大波長，大概在550nm附近，必要時加一個參比波長以扣除非特異性吸收。

6、吸收值分析

在理想的MTT實驗中，如果是細胞抑制實驗，不加藥物處理組的吸收值應該在0.8-1.2左右，太小檢測誤差占的比例較多，太大吸收值可能已經超出線性范圍。這個原理在朗伯-比爾定律中有解釋。

7、建議

如果你覺得MTT中出現的問題不好解決，那么建議你做CCK-8實驗，原理與MTT相似，但操作上簡化些，當然，費用也稍微高一些。

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